(一)材料與試劑
1.抗原 牛結核PPD。
2.血清 待檢血清、標準結核陽性血清和結核陰性血清。
3.硝酸纖維膜 孔徑0.45μm。
4.氯化金(優質)
5.0.2Mol/L PB液
6.0.05Mol/L Tris—HCl緩沖液
7.硝酸銀顯影液(現用現配)
明膠(20g/L) 6.00ml
對苯二酚(57.90g/L) 3.00ml
硝酸銀(25g/L) 0.20ml
pH3.5檸檬酸鹽緩沖液 1.00ml
對苯二酚和硝酸銀溶液需避光保存,臨用前將明膠加熱溶解后,按上述比例依次混合。
pH3.5檸檬酸鹽緩沖液的配制:
檸檬酸(C6H8O7·H2O) 25.50g
檸檬酸三鈉(C6H5Na3·2H2O) 3.50g
去離子水 加至 100.00ml
溶解后即可使用。
8.定影液
硫代硫酸鈉(Na2S2O3) 20.0g
去離子水 加至 100.00ml
溶解即可。
9.兔抗牛IgG抗體。
(二)操作方法
1.膠體金的制備 試驗用水均要求三蒸餾水并過去離子柱,*終去離子水的電阻大于100萬Ω。所有容器*終均用去離子水清洗。
(1)采用鞣酸—枸櫞酸鈉還原法制備
A液 1%HAuCl4 2.00ml
去離子水 158.00ml
B液 1%枸櫞酸鈉 8.00ml
0.1%Mol/L K2CO3 0.20ml
1%鞣酸 0.20ml
去離子水 31.60ml
將A液和B液分別于60℃水浴30min,并不時攪拌,迅速將B液加入至A液中,攪拌,顏色為深藍色,繼續加熱至100℃,5 min~10min,溶液顏色變為深紅色,自然冷卻后4℃保存。
(2)膠體金鑒定:外觀呈深紅色、晶瑩透亮,迎著日光可見有光帶。電鏡觀察膠體金粒子大小平均為10nm,顆粒大小一致,分布均勻。
2.膠體金與兔抗牛IgG用量比例的確定 每ml膠體金所需的穩定蛋白量是30μg,根據試劑用量增加20%,所以每ml膠體金所需的穩定兔抗牛IgG量為36μg。
3.金標記兔抗牛IgG的制備 取所需量的兔抗牛IgG,加入少許去離子水,用0.1Mol/L K2CO3溶液調pH值為9.0(用精密pH試紙測定),同時膠體金溶液的pH值也調至9.0。在磁力攪拌下,將20ml膠體金溶液加入至兔抗牛IgG中,繼續攪拌10min,加入3.5ml 3%的聚乙二醇(分子量20 000)作為穩定劑,以使其*終濃度達到0.05%,再攪拌15min后,置4℃冰箱保存備用。
4.金標兔抗牛IgG的純化 將金標記的兔抗牛IgG以2 500r/min離心15min,以除去膠體金的聚合物,取上清以65 000g離心1h,可見離心物分為三層,上層為淡黃色,含有未結合的兔抗牛IgG,下層為近黑色,是尚未結合的膠體金顆粒,*主要的中間層為紅色,是結合良好的金標記的兔抗牛IgG,傾去上層,收集中層液,用含0.1%BSA的0.01Mol/L pH8.2PB混合至原體積的1/10,過濾除菌,分裝,4℃保存備用。
5.金標記兔抗牛IgG的鑒定
(1)顆粒大小及均勻度鑒定:取少許金標記的兔抗牛IgG,負染,電鏡觀察顆粒大小及均勻度,并測量粒子直徑大小。
(2)活性鑒定:將牛IgG點樣于硝酸纖維膜上,直接加金標兔抗牛IgG抗體,應顯示出明顯的粉紅色斑點。
6.正式試驗程序
(1)點樣 以打孔器將微孔濾膜制成直徑3mm的膜片。將牛結核PPD用0.01Mol/LpH9.0PBS液稀釋為40μg/ml,用微量加樣器加1μl抗原于膜片中央,37℃烘干10min。
(2)封閉 將膜片置于0.01Mol/L pH7.4含0.2%BSA的PBST液中,37℃作用45min,其間振蕩數次。取出后以蒸餾水洗滌1次,用濾紙吸干。
(3)加待檢血清 待檢血清以PBST液做1︰160倍稀釋。將膜片浸入其中,37℃作用1h,其間振蕩數次。取出后,以PBST液洗滌后,濾紙吸干。此步同時設標準陽性血清和陰性血清對照。
(4)加金標抗體 以PBST液將金標液作1︰10稀釋,將膜片浸入其中,37℃作用2h,中間振蕩數次。
(5)銀染 將膜片從金標液中取出,于去離子水洗滌3次,每次3min。然后將膜片浸入暗室中的銀染色液中,室溫下作用10min,移入定影液中,室溫作用5min。然后用去離子水沖洗,自然干燥后觀察結果。
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