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  • 發布時間:2019-07-29 12:25 原文鏈接: PCR技術(九):PCR擴增產物的電泳分析

    凝膠電泳分瓊脂糖電泳和聚丙烯酰胺凝膠電泳兩種.

    一、瓊脂糖凝膠電泳:

      瓊脂糖凝膠電泳是一種非常簡便、快速、最常用的分離純化和 鑒定核酸的方法.瓊脂糖是從海藻中提取的一種線狀高聚物.根據瓊脂糖的溶解溫度, 把瓊脂糖分為一般瓊脂糖和低熔點瓊脂糖.低熔點瓊脂糖熔點為62~65℃,溶解后在 37℃下維持液體狀態約數小時,主要用于DNA片段的回收,質粒與外源性DNA的快速連 接等.

    (一)凝膠濃度

      凝膠濃度的選擇依DNA分子的大小而定.

    瓊脂糖凝膠的濃度與DNA分離范圍

    瓊脂糖濃度(%)

    線型DNA分子的分離范圍(Kb)

    0.3

    560

    0.6

    120

    0.7

    0.810

    0.9

    0.57

    1.2

    0.96

    1.5

    0.23

    12.0

    0.12

    (二)電泳緩沖液

      核酸電泳緩沖液有三種,即Tris-硼酸(TBE)、Tris-乙酸(TAE)和Tris-磷酸(TPE).TBE 與TPE緩沖容量高,DNA分離效果好,但TPE在DNA片段回收時含磷酸鹽濃度高,容易使 DNA沉淀.TAE緩沖容量低,但價格較便宜,因而推薦選用TBE.緩沖液中的EDTA可螯合 二價陽離子,從而抑制DNA酶的活性,防止PCR擴增產物降解.

      10XTBE緩沖液的配制

      Tris鹼,108克

      EDTA,9.3克

      硼酸,55克

      H2O至,1000ul

      (其PH應為8.0~8.2)

      臨用時用水稀至0.5XTBE(20倍稀釋.

    (三)核酸電泳的指示劑與染色劑

      1.指示劑:核酸電泳常用的指示劑有溴酚蘭和二甲苯青及銀染色.溴酚蘭在堿性液體中 呈紫蘭色,在0.6%、1%、1.4%和2%瓊脂糖凝膠電泳中,溴酚蘭的遷移率分別與1Kb、 0.6Kb、0.2Kb和0.15Kb的雙鏈線性DNA片段大致相同.二甲苯青的水溶液呈蘭色,它在 1%和1.4%瓊脂糖中電泳時,其遷移速率分別與2Kb和1.6Kb的雙鏈線性DNA大致相似.

      指示劑一般與蔗糖、甘油或聚蔗糖400組成載樣緩沖液.載樣緩沖液的作用有①增加樣 品密度,使其比重增加,以確保DNA均勻沉入加樣孔內.②在電泳中形成肉眼可見的指 示帶,可預測核酸電泳的速度和位置.③使樣品呈色,使加樣操作更方便.

      染色劑:核酸電泳后,需經染色后才能顯現出帶型,最常用的是溴化乙錠染色法,其 次是銀染色.

      溴化乙錠(ethidium bromide,EB)是一種熒光染料,EB分子可嵌入核酸雙鏈的堿基對 之間,在紫外線激發下,發出紅色熒光.根據情況可在凝膠電泳液中加入終濃度為 0.5ug/ml的EB,有時亦可在電泳后,將凝膠浸入該濃度的溶液中染色10~15min.瓊脂 糖凝膠EB染色,肉眼可見核酸電泳帶,其DNA量一般>5ng,當溴化乙錠太多,凝膠染 色過深,核酸電泳帶看不清時,可將凝膠放入蒸餾水浸泡30min后再觀察.

      銀染色:銀染色液中的銀離子(Ag+)可與核酸形成穩定的復合物,然后用還原劑如甲醛 使Ag+還原成銀顆粒,可把核酸電泳帶染色黑褐色.主要用于聚丙烯酰胺凝膠電泳染色. 也用于瓊脂糖凝膠染色.其靈敏度比EB高200倍.但銀染色后,DNA不宜回收.

    (四)電泳

      1.電泳裝置:

      電泳裝置主要有電泳儀,電泳槽及灌膠模具等.

      2.電泳方法:

      (1)用蒸餾水將電泳槽和梳子沖洗干凈.放在水平桌面上,并架好梳子.

      (2)根據核酸分子量的大小配制不同濃度的瓊脂糖凝膠,一般200~400bp的DNA片段, 可配制1.2~1.7%濃度的瓊脂糖用于電泳.

      3.配制0.5XTBE電泳緩沖液100ml于三角燒瓶中,稱取一定量的瓊脂糖粉放入后沸水鍋 或微波爐內加熱熔化.冷卻至60℃(需要時可加入溴乙錠),倒入電泳槽中,待凝固.

      4.向電泳槽中倒入0.5XTBE,其量以沒過膠面2mm為宜,小心移去梳子.如樣品孔內有 氣泡,應設法除去.

      5.在DNA樣品中加入0.2體積的載樣緩沖液,混勻后,加入樣品孔內.

      6.接通電源,一般紅色為正極黑色為負極,切記DNA樣品由負極往正極泳動(靠近加樣 孔的一端為負).電壓為1-5V/cm(長度以兩個電極之間的距離計算).

      7.根據指示劑泳動的位置,判斷是否終止電泳.一般200~400bp的PCR產物50V電壓, 電泳20~40min即可.

      (3)溴化乙錠染色后,紫外儀上觀察電泳帶及其位置,并與核酸分子量標準比較被擴 增產物的大小.

    二、聚丙烯酰胺凝膠電泳

      聚丙烯酰胺凝膠電泳適宜分離鑒定低分子量蛋白質、小于1Kb的DNA片段和DNA序列分 析.其裝載的樣品量大,回收DNA純度高.長度僅相差0.2%(即500bp中的1bp)的核苷酸 分子即能分離.

      聚丙烯酰胺凝膠是由丙烯酰胺單體,在催化劑TEMED(N,N,N,N'一四甲基乙二胺)和 過硫酸銨的作用下,丙烯酰胺聚合形成長鏈,聚丙烯酰胺鏈在交聯劑,N,N'一亞甲 雙丙烯酰胺參與下,聚丙烯胺鏈與鏈之間交叉聯接而形成凝膠.

      聚丙烯酰胺凝膠孔徑的大小是由丙烯酰胺的濃度決定的,不同濃度丙烯酰胺和DNA的 有效分離范圍見表2.

    丙烯酰胺(%)

    有效分離范圍(bp)

    溴酚蘭*

    二甲苯青*

    3.5

    1002000

    100

    460

    5.0

    80500

    65

    260

    8.0

    60400

    45

    160

    12.0

    40200

    30

    70

    15.0

    25150

    15

    60

    20.0

    10100

    12

    45

      *表中給出的數字為與指示劑遷移率相等的雙鏈DNA分子所含堿基對數目(bp).

    (一)材料

      1.電泳儀器:電泳儀,垂直電泳槽及其附件.

      2.30%丙烯酰胺

      丙烯酰胺,29克

      N,N'一亞甲基雙丙烯酰胺,1克

      H2O,加至100ml

      裝于棕色瓶內,4℃可保存二個月.

      3.10%過硫酸銨

      過硫酰銨,1克

      加水至,10ml

      4℃可保存一周,-20℃可保存一個月.

      4.1XTBE電泳緩沖液

      5.TEMED(四甲基乙烯基二胺)

    (二)聚丙烯酰胺凝膠的制備與電泳

      根據分離DNA片段的大小及需凝膠的容積,配制聚丙烯酰胺凝膠.

      1.按要求裝配好垂直電泳板,兩塊玻璃板的兩側及底部用1%的瓊脂 糖封邊,防止封閉不嚴而使聚丙烯酰胺液漏出.

      2.將裝好的玻璃電泳板傾斜成45~60℃角.

      3.按表3配制所需%濃度凝膠的毫升數.

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