RT-PCR PROTOCOL
材料與方法…………………………………………………………
1.材料 ………………………………………………………
1.1 供試用組織(細胞)…………………………………
1.2 主要儀器設備………………………………………
1.3 主要試劑……………………………………………
1.4 工具酶及試劑盒……………………………………
2.實驗方法……………………………………………………
2.1 總RNA提取…………………………………………
2.2 RT-PCR………………………………………………
2.3 瓊脂糖凝膠電泳……………………………………
材料與方法
1. 材料
1.1 供試用動物組織/細胞
1.2 主要儀器設備
1.5ml離心管、0.2ml PCR管、高速離心機、5~10ul加樣器、2~20ul加樣器、20~200ul加樣器、TAKARA PCR儀、551可見光透射儀
1.3 主要試劑
RNAlocker、RNAout、RNAsaver、氯仿、異丙醇、75%乙醇、瓊脂糖、SYBRGREEN I染料。
1.4 工具酶及試劑盒
TaKaRa One Step RNA PCR Kit
2. 方法
2.1 RNA提取和純化
估算RNAout、組織或細胞的用量。取組織或細胞后,將剩余的組織或細胞放入RNAlocker中保存以備下次使用。將組織或細胞勻漿后,加入1.5ml離心管。加入0.2倍RNAOUT體積的氯仿,振蕩混勻30秒。室溫離心15000g 3分鐘。將上清液轉移到另一干凈離心管中。在上清液中加入等體積的異丙醇,振蕩器上振蕩混均30秒。室溫離心15000g 5分鐘,RNA沉淀將在離心底的側面形成,小心吸棄上清液。清洗:在含RNA沉淀的離心管中加入1毫升75%乙醇,振蕩器上振蕩混均30秒。室溫離心15000g,1分鐘。小心吸棄上清液。重復清洗步驟。將離心管倒置于濾紙上以干燥RNA。加DEPC水使RNA沉淀溶解,剩余的RNA沉淀使用RNAsaver溶解以備下次使用。
2.2 RT-PCR
2.2.1 取TaKaRa One Step RNA PCR Kit,按下列組成配制RT-PCR反應液。
10×One Step RNA PCR Buffer 5μl
MgCl2(25mM) 10μl
dNTP Mixture(10mM) 5μl
Rnase Inhibitor(40U/μl) 1μl
AMV RTase XL(5U/μl) 1μl
AMV-Optimized Taq(5U/ul) 1μl
上游特異性引物(20μM) 1μl
下游特異性引物(20μM) 1μl
Positive Control RNA或實驗樣品(≤1μg total RNA)* 1μl
Rnase Free dH2O 24μl
Total 50μl/Sample
*當目的RNA的表達數量較少時,可加至25μl。同時在反應體系中相應地應叫少Rnase Free dH2O的量。
2.2.2 按以下條件進行RT-PCR反應。
50℃ 30min RT反應
94℃ 2min RTase失活
94℃ 30sec
37℃~65℃ 30sec
72℃ 1~10min PCR反應25~30循環
● 當RNA為Positive Control RNA時,反應條件如下。
50℃ 15min RT反應
94℃ 2min RTase失活
94℃ 30sec
60℃ 30sec
72℃ 1.5min 25~30循環
2.2.3 反應結束后,取PCR反應液 (5 ~ 10 ?l) 進行瓊脂糖凝膠電泳,確認RT-PCR反應產物。
如果此PCR產物需用于以后實驗,應將PCR產物冷凍保存。
Control反應時擴增片段大小為462 bp。
2.3 RT-PCR產物確認
電泳后,將SYBRGREEN I染色的凝膠用可見光透射儀觀察結果,確認RT-PCR產物。
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