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  • 植物組織ATP酶活性測定

    一、原理 ATP酶(adenosinetriphosphatase)可催化ATP水解生成ADP及無機磷的反應,這一反應放出大量能量,以供生物體進行各需能生命過程。它存在于生物細胞的多個部位,比如細胞質膜上,葉綠體 類囊體膜上,對整個生命的維持有著重要的作用。在生物學研究中,常通過測定酶促反應釋放的無機磷量或ATP的減少量以及pH變化等來測定ATP酶的活力。本實驗通過測酶促反應過程中無機磷的釋放量來測定葉綠體偶聯因子ATPase的活力。偶聯因子是分布在葉綠體類囊體膜表面的一種復合蛋白,它在光合作用能量轉換反應中起重要作用。在正常情況下,膜上的偶聯因子催化光合磷酸化反應(ATP合成)的速率很高,而水解ATP的活力是十分低的,但用二硫蘇糖醇(DTT)、胰蛋白酶或較高溫度等激活后,它水解ATP的活力可大大增加。因此,偶聯因子的測定常用激活后的ATPase水解ATP的活力來表示。 二、材料、儀器設備 及......閱讀全文

    植物組織ATP酶活性測定

    一、原理 ATP酶(adenosinetriphosphatase)可催化ATP水解生成ADP及無機磷的反應,這一反應放出大量能量,以供生物體進行各需能生命過程。它存在于生物細胞的多個部位,比如細胞質膜上,葉綠體 ?類囊體膜上,對整個生命的維持有著重要的作用。在生物學研究中,常通過測定酶促反應

    心肌肌原纖維ATP酶的提取和活性測定

    心肌肌原纖維是興奮收縮耦聯的重要環節之一, 它直接決定著心肌收縮力的產生和發展。近年來, 隨著分子生物學技術的不斷發展, 使人們對心肌肌原纖維的分子結構有了更深入的了解和認識。 ?

    心肌肌原纖維ATP酶的提取和活性測定——差速離心法

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    酶活性測定實驗

    實驗方法原理U/L=K?ΔA/min實驗步驟1. 誘導試劑.2. 開機預溫達37度.3. 選取測定程序.4. 測試:加入試劑準確計的30秒后測定讀取吸光度.以后每隔30秒測定一次.5. 實驗結果:計算ΔA/min求出測定結果.

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    植物組織中脂肪氧化酶活力的測定方法

    脂肪氧化酶(LOX)是一種含非血紅素鐵的蛋白質,專一催化具有順、順-1,4-戊二烯結構的多元不飽和脂肪酸加氧反應,氧化生成具有共軛雙鍵的過氧化氫物。它廣泛存在于高等植物 ?體內,與植物的生長發育、植物的衰老、脂質過氧化作用和光合作用、傷反應及其他脅迫反應等有關。 【原理】 根據基質濃度一

    植物組織水勢的測定

    植物水勢的測定先用折射儀法再用小液流法。折射儀測定法會因為植物的細胞壁而產生一定的誤差,只能得到一個不準確的值。根據這個值,就可以縮小蔗糖濃度梯度的閾值范圍,從而更快速準確的測得水勢。《植物生理學實驗》分7個部分,有28個實驗,涉及植物生理學相關實驗的基本原理、基礎知識、基本實驗技能和拓展應用,內容

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    酶活性的測定方法

    一般采用測定酶促反應初速度的方法來測定活力,因為此時干擾因素較少,速度保持恒定。反應速度的單位是濃度/單位時間,可用底物減少或產物增加的量來表示。因為產物濃度從無到有,變化較大,而底物往往過量,其變化不易測準,所以多用產物來測定

    酶活性測定的方式

      酶促反應速度的測定可采用兩種方式:  一、測定完成一定量反應所需的時間;  二、測定單位時間內的酶促反應量。前者稱為終點法,后者稱為動力學法。  終點法  該方式是在特定條件下,將樣品中要檢知的酶作用一定量的底物,然后根據反應進行到某一程度(即達到某一指標)所需要的時間長短來估計酶的活力。  其

    酶活性測定方法對比

      1.按反應時間分類法:20世紀50年代以前大都使用固定時間法。這種方法是以酶催化反應的平均速度來計算酶的活性,現多已不用。50年代中期開始采用連續監測法。這種方法用自動生化分析儀上完成,可以測酶反應的初速度,其結果遠比固定時間法準確,在高濃度標本尤為明顯,但本法也受到反應時間,反應溫度,試劑等的

    酶活性的測定實驗

    連續性檢測 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 1.酶的量或濃度可以用摩爾量表示,或者用酶單位的活性表示。酶活力=每單位時間轉化的底物摩爾數=速率×反應體積。酶活性是存在的活性酶量

    酶活性測定方法對比

    1.按反應時間分類法:20世紀50年代以前大都使用固定時間法。這種方法是以酶催化反應的平均速度來計算酶的活性,現多已不用。50年代中期開始采用連續監測法。這種方法用自動生化分析儀上完成,可以測酶反應的初速度,其結果遠比固定時間法準確,在高濃度標本尤為明顯,但本法也受到反應時間,反應溫度,試劑等的影響

    酶活性的測定實驗

    酶活性的測定可應用于:(1)酶動力學的研究;(2)酶抑制的研究。實驗方法原理1.酶的量或濃度可以用摩爾量表示,或者用酶單位的活性表示。酶活力=每單位時間轉化的底物摩爾數=速率×反應體積。酶活性是存在的活性酶量的量度,取決于指定的條件。SI單位是katal,1 katal = 1 mol /s,更實際

    酶活性測定方法對比

    1.按反應時間分類法:20世紀50年代以前大都使用固定時間法。這種方法是以酶催化反應的平均速度來計算酶的活性,現多已不用。50年代中期開始采用連續監測法。這種方法用自動生化分析儀上完成,可以測酶反應的初速度,其結果遠比固定時間法準確,在高濃度標本尤為明顯,但本法也受到反應時間,反應溫度,試劑等的影

    植物組織中超氧物歧化酶活力的測定

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    植物組織和細胞顯微化學染色_植物組織中酶檢測方法

    實驗步驟植物組織中酶的組織化學鑒定,其基本原理是以某些物質為基屈,在專一酶的作用下,產生 種有顏色的化合物來表示某種酶的存在。為保持酶的活性,通常要采用冰凍切片法來得到切片,有時也可用徒手切片法。(1)細胞色素氧化酶:將切片放人磷酸緩沖液 (pH 值 5.8) 中,室溫下放置 5-10min, 然后

    植物體內抗壞血酸氧化酶活性的測定實驗

    實驗方法原理 抗壞血酸氧化酶在有氧情況下,能氧化抗壞血酸成脫氫抗壞血酸,同時促進其氫與空氣中的氧結合成水。抗壞血酸氧化酶的測定是在該酶的最適pH及適宜的溫度下,向反應瓶中加入一定量的底物(抗壞血酸)及酶提取液,讓酶作用一段時間,然后測定底物被消耗的數量來計算酶的活性。抗壞血酸被消耗的量,可用碘液滴定

    植物體內多酚氧化酶活性的測定實驗

    實驗方法原理多酚氧化酶是一種含銅的氧化酶,在有氧的條件下,能使一元酚和二元酚氧化產生醌。用分光光度法在525nm波長下測其吸光度,即可計算出多酚氧化酶的活力和比活性。反應式如下:.實驗材料馬鈴薯塊莖試劑、試劑盒聚乙烯吡咯烷酮磷酸緩沖液磷酸緩沖液和度硫酸銨兒茶酚三氯乙酸儀器、耗材UV-1206UV-1

    植物體內多酚氧化酶活性的測定實驗

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    植物體內抗壞血酸氧化酶活性的測定實驗

    實驗方法原理抗壞血酸氧化酶在有氧情況下,能氧化抗壞血酸成脫氫抗壞血酸,同時促進其氫與空氣中的氧結合成水。抗壞血酸氧化酶的測定是在該酶的最適pH及適宜的溫度下,向反應瓶中加入一定量的底物(抗壞血酸)及酶提取液,讓酶作用一段時間,然后測定底物被消耗的數量來計算酶的活性。抗壞血酸被消耗的量,可用碘液滴定剩

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    植物組織水勢的測定實驗

    實驗方法原理水勢表示水分的化學勢。象電流是由高電位向低電位處移動一樣,水從水勢高處流向水勢低處。植物體細胞之間以及植物體有環境間的水分移動方向都由水勢差決定。當植物細胞或組織放在溶液中時,如果植物細胞的水勢小于溶液的滲透勢(溶質勢),則組織吸水而使溶液濃度變大,反之,則植物細胞內水分外流而使溶液濃度

    植物組織汁液濃度的測定

    植物 ?細胞汁液的濃度與植物的水分代謝、生長、抗性及果蔬品質等有關。當植物缺水時,葉肉細胞汁液濃度增高,因此可作為灌溉生理指標。細胞汁液濃度大時,植物生長速度減慢而且抗性增強。果實、蔬菜中糖酸等溶質的含量也可用細胞汁液濃度表示,稱為可溶性固形物,是果蔬品質的重要指標。本實驗采用折射儀或手持糖量計

    植物組織水勢的測定實驗

    實驗方法原理水勢表示水分的化學勢。象電流是由高電位向低電位處移動一樣,水從水勢高處流向水勢低處。植物體細胞之間以及植物體有環境間的水分移動方向都由水勢差決定。當植物細胞或組織放在溶液中時,如果植物細胞的水勢小于溶液的滲透勢(溶質勢),則組織吸水而使溶液濃度變大,反之,則植物細胞內水分外流而使溶液濃度

    植物組織水勢的測定實驗

    實驗方法原理 水勢表示水分的化學勢。象電流是由高電位向低電位處移動一樣,水從水勢高處流向水勢低處。植物體細胞之間以及植物體有環境間的水分移動方向都由水勢差決定。當植物細胞或組織放在溶液中時,如果植物細胞的水勢小于溶液的滲透勢(溶質勢),則組織吸水而使溶液濃度變大,反之,則植物細胞內水分外流而使溶液濃

    脂肪酶的活性測定

    方法:⒈粗酶液的制備用電子天平分別稱取粗脂肪酶0.010 g、0.020 g 和0.030 g, 用蒸餾水溶解并定容至100 mL, 配成濃度分別為0.01%、0.02% 和0.03%的粗酶液。⒉實驗設計本實驗以10 mL色拉油為底物,以酶用量、水解溫度、反應時間為因素,通過酸價的測定選定其水解的最

    單胺氧化酶活性測定

    實驗材料 大鼠試劑、試劑盒 磷酸鈉緩沖液蒸餾水鹽酸苯乙胺甲苯5-羥色胺雙草酸鹽β-乙基-苯乙胺鹽酸鹽苯-醋酸乙酯閃爍液儀器、耗材 制冰機水浴鍋試管試管架計數瓶離心機離心管移液槍漩渦振蕩儀

    脂肪酶的活性測定

    方法:⒈粗酶液的制備用電子天平分別稱取粗脂肪酶0.010 g、0.020 g 和0.030 g, 用蒸餾水溶解并定容至100 mL, 配成濃度分別為0.01%、0.02% 和0.03%的粗酶液。⒉實驗設計本實驗以10 mL色拉油為底物,以酶用量、水解溫度、反應時間為因素,通過酸價的測定選定其水解的最

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